Kolonizacja rytualna i zakażenie ran stanowią podwójny problem dla klinicystów. Po pierwsze, istnieje możliwość opóźnionego gojenia się rany, szczególnie w przypadku upośledzonego układu odpornościowego lub gdy rana jest poważnie zanieczyszczona lub słabo perfundowana.1 Po drugie, skolonizowane i zakażone rany są potencjalnym źródłem zakażeń krzyżowych – co jest szczególnie ważne w związku z rozprzestrzenianiem się gatunków opornych na antybiotyki. Dla pacjentów zakażona rana może mieć dodatkowe konsekwencje, w tym zwiększony ból i dyskomfort, opóźnienie powrotu do normalnej aktywności oraz możliwość wystąpienia choroby zagrażającej życiu. Dla pracowników służby zdrowia oznacza to wzrost kosztów leczenia i wydłużenie czasu pracy pielęgniarek.1,2 Do niedawna miejscowe zakażenie rany było wyzwaniem, z którym wiązało się niewiele możliwości leczenia. Jednakże pojawienie się zaawansowanych opatrunków zawierających miejscowe środki przeciwdrobnoustrojowe, takie jak srebro, zapewniło nowe podejście do zwalczania patogenów w ranach.3,4 Srebro ma udowodnione działanie przeciwdrobnoustrojowe, które obejmuje bakterie oporne na antybiotyki, takie jak gronkowiec złocisty oporny na metycylinę (MRSA) i enterokoki oporne na wankomycynę (VRE).4 Jego rola jako środka przeciwdrobnoustrojowego jest szczególnie atrakcyjna, ponieważ ma ono szerokie spektrum działania przeciwdrobnoustrojowego5,6 przy minimalnej toksyczności w stosunku do komórek ssaków w niskich stężeniach7 i ma mniejszą niż antybiotyki tendencję do wywoływania oporności ze względu na aktywność w wielu miejscach docelowych bakterii.8 Miejscowe kremy lub roztwory zawierające srebro (np. sulfadiazyna srebra) są od dawna stosowane jako podstawa leczenia ran u pacjentów z oparzeniami, którzy są szczególnie podatni na zakażenia.1 Jednakże, wadą ich stosowania jest barwienie skóry i toksyczność.3 Ponadto, konieczność częstego usuwania i ponownego stosowania sulfadiazyny srebra ze względu na rozwój pseudo-brodawek jest zarówno czasochłonna dla specjalistów, jak i bolesna dla pacjentów.3,9 Obecnie do użytku klinicznego dostępnych jest wiele opatrunków przeciwdrobnoustrojowych zawierających srebro wbudowane w opatrunek lub nałożone na niego.10 Ta nowa klasa opatrunków została zaprojektowana tak, aby zapewnić działanie przeciwdrobnoustrojowe miejscowego srebra w wygodniejszej aplikacji. Jednak same opatrunki różnią się znacznie pod względem zawartości srebra oraz właściwości fizycznych i chemicznych. W niniejszej pracy porównano in-vitro aktywność przeciwbakteryjną 7 takich opatrunków wobec 2 powszechnie występujących patogenów ran, Staphylococcus aureus i Pseudomonas aeruginosa. Badana jest korelacja pomiędzy zawartością srebra i/lub uwalnianiem srebra z każdego opatrunku a jego działaniem przeciwbakteryjnym, a także porównywane są czynniki związane z zapewnieniem optymalnego środowiska dla gojenia się rany, co stanowi podstawę do ogólnej oceny klinicznie wartościowych właściwości każdego z opatrunków.Metody W niniejszym badaniu oceniano właściwości 7 opatrunków przeciwbakteryjnych zawierających srebro: 3 opatrunków włóknistych-AQUACEL® Ag (ConvaTec, Skillman, NJ, USA; określany w całym artykule jako włóknina A), Acticoat™ Absorbent (Smith & Nephew, Londyn, Wielka Brytania; określany w całym artykule jako włóknina B) oraz SILVERCEL™ (Johnson & Johnson Wound Management, Somerville, NJ, USA; określany w niniejszym artykule jako włóknina C); 2 opatrunki piankowe – Contreet® Foam (Coloplast, Holtedam, Dania; określany w niniejszym artykule jako pianka A) i PolyMem® Silver (Ferris, Burr Ridge, Ill, USA; określany w niniejszym artykule jako pianka B); opatrunek z gazy – Urgotul® S.Ag (Laboratoires Urgo, Chenôve, Francja; w całym artykule określany jako gaza); oraz nieprzylepny polimerowy arkusz hydrożelowy-SilvaSorb® (AcryMed/Medline, Mundelein, Ill, USA; w całym artykule określany jako hydrożel). Chociaż wszystkie 7 opatrunków zawiera srebro, różnią się one składem i strukturą (tab. 1). Waga opatrunków wahała się od 1,05 g do 6,93 g dla kawałka o wymiarach 10 cm x 10 cm. Bakterie. Opatrunki testowano wobec 2 powszechnie występujących patogenów ran, tj. Staphylococcus aureus NCIMB 9518 (gram dodatni) i Pseudomonas aeruginosa NCIMB 8626 (gram ujemny). Pomiar aktywności przeciwbakteryjnej. Aktywność przeciwbakteryjną oceniano w testach typu repeat-challenge przez okres 7 dni dla każdego z 7 opatrunków zawierających srebro (SCD) oraz dla opatrunku kontrolnego nie zawierającego srebra (NSCD, AQUACEL®, ConvaTec). Aby jak najlepiej odtworzyć warunki kliniczne, w których opatrunki te są stosowane, a jednocześnie zapewnić spójne i powtarzalne środowisko dla wszystkich testowanych opatrunków, przygotowano symulowany płyn z rany składający się w 50% z płodowej surowicy cielęcej (First Link Ltd, testowany na mykoplazmy) i w 50% z rozcieńczalnika do maksymalnego odzysku (MRD, LABM, UK; 0,1% w/v pepton i 0,9% w/v chlorek sodu). Bakterie inokulowano do symulowanego płynu z rany (SWF) tak, aby końcowa objętość wynosiła 10 mL, a gęstość populacji wynosiła około 1 x 106 cfu/mL. Ze względu na wyższą zdolność absorpcji swobodnego pęcznienia opatrunków piankowych, użyto objętości 20 mL, aby umożliwić pobieranie próbek seryjnych bez zniekształcania opatrunków; jednakże, aby zapewnić równoważne wyzwanie bakteryjne, gęstość populacji bakterii została zmniejszona o połowę. Kwadrat o wymiarach 5 cm x 5 cm kontroli SCD lub NSCD został przeniesiony do inokulum, a probówki inkubowano w temperaturze 35oC. Próbki (100 µl) pobierano do oznaczenia całkowitej liczby żywych bakterii po 4, 24, 48, 72 i 96 godzinach oraz w dniu 7. W 48-godzinnym punkcie czasowym, każda próbka testowa została ponownie zaszczepiona w przybliżeniu 1 x 106 cfu/mL oryginalnego organizmu prowokującego. Każdy test został przeprowadzony w 4 oddzielnych przypadkach. Oznaczenia chemiczne. Pomiar całkowitej zawartości srebra. Próbki były trawione przez ogrzewanie w mieszaninie stężonych kwasów siarkowego i azotowego w celu rozbicia matrycy opatrunkowej oraz uwolnienia i rozpuszczenia całego obecnego w niej srebra. Następnie poferment był filtrowany i rozcieńczany wodą dejonizowaną, aby umożliwić oznaczenie ilościowe srebra metodą spektrofotometrii absorpcji atomowej. Oznaczenia wykonywano w trzech egzemplarzach. Pomiar pH opatrunku. Trzy próbki z każdego opatrunku zostały zawieszone w dejonizowanej wodzie w stosunku 1:100 (w/v) i były mieszane wałkiem w temperaturze pokojowej przez 3 godziny, aby zapewnić, że próbki osiągnęły stan równowagi. Pomiaru pH dokonano za pomocą pH-metru z elektrodą kombinowaną, skalibrowaną na pH 4 i 7 lub pH 7 i 10, odpowiednio do pH mierzonej próbki. Pomiar uwalniania srebra do wody w czasie. Odważona porcja (w dwóch egzemplarzach) z każdego opatrunku została zawieszona w dejonizowanej wodzie w stosunku 1:100 (w/v), a próbki umieszczono w środowisku o kontrolowanej temperaturze (37 ± 3oC) na 7 dni. W tym okresie podwielokrotności były pobierane w określonych odstępach czasu, a płyn był wymieniany w celu utrzymania stałej objętości. Próbki filtrowano, odpowiednio rozcieńczano i analizowano metodą absorpcyjnej spektrometrii atomowej. Badanie absorpcji (właściwości przenoszenia płynów). Pomiar absorpcji płynu pod różnymi przyłożonymi ciśnieniami. Zważono kwadratową próbkę każdego opatrunku o wymiarach 5 cm x 5 cm (W1), umieszczono ją na perforowanej płycie ze stali nierdzewnej i przykryto płaską płytą Perspex o wymiarach nieco większych niż opatrunek. Żądane ciśnienie ściskające zastosowano poprzez umieszczenie ciężarków na wierzchu płyty Perspex. Następnie cały układ zanurzono w tacy z roztworem A (roztwór chlorku sodu i chlorku wapnia, odpowiednio 0,142 mol l-1 i 0,0025 mol l-1) w temperaturze 20oC na 20 sekund, tak aby materiał opatrunkowy został całkowicie pokryty. Próbkę wyjęto i umieszczono na podwójnej warstwie chłonnego ręcznika papierowego w celu usunięcia swobodnie ściekającego płynu, a następnie ponownie zważono (W2). Wagę wchłoniętego i zatrzymanego płynu na gram obliczano jako (W2 – W1)/W1. Pomiar pionowego odprowadzania wilgoci. Odległość pionowego odprowadzania mierzono tylko dla opatrunków włóknistych, ponieważ metoda ta jest nieodpowiednia dla swobodnie odprowadzających pianek i gauzów oraz stałych produktów hydrożelowych. Pasek opatrunku o szerokości 15 mm i długości 100 mm był opuszczany pionowo do wanny z roztworem A zawierającym czerwony barwnik (0,25 g/L eozyny), aż do zanurzenia 10 mm długości. Po 60 sekundach mierzono pionowy ruch cieczy (w mm) w górę opatrunku ponad powierzchnię cieczy. Pomiar szybkości dehydratacji. Zważono kwadratową próbkę każdego opatrunku o wymiarach 5 cm x 5 cm, a następnie zanurzono ją w nadmiarze objętości roztworu A w temperaturze 37oC na 30 minut. Następnie próbki wyjmowano, zawieszano za róg na 30 sekund w celu usunięcia swobodnie ściekającego płynu, po czym ponownie ważono. Uwodnione próbki układano na suchych płytkach Petriego bez przykrywek i umieszczano w inkubatorze w temperaturze 37oC. Ubytek masy każdej próbki mierzono co godzinę i obliczano tempo ubytku masy.Wyniki Aktywność przeciwbakteryjna… Aktywność przeciwbakteryjna 7 SCDs wobec S. aureus (rysunek 1) i P. aeruginosa jest jak pokazano (rysunek 2). Włóknina A, włóknina B, włóknina C i gaza wykazały największą ogólną aktywność przeciwbakteryjną, redukując liczbę bakterii zarówno dla S. aureus jak i P. aeruginosa z ponad 1 miliona jednostek tworzących kolonię na mL płynu (cfu/mL) do mniej niż 500 cfu/mL w ciągu 48 godzin. Włóknina B zmniejszyła liczbę S. aureus poniżej granicy wykrywalności (mniej niż 10 cfu/mL) w ciągu 24 godzin. Włóknina A i włóknina B były wysoce skuteczne wobec P. aeruginosa, redukując liczbę żywych mikroorganizmów poniżej granicy wykrywalności w ciągu 24 godzin. Po ponownym kontakcie z wysokim stężeniem bakterii 48 godzin po rozpoczęciu testu, zarówno włóknina A jak i włóknina B pozostały wysoce skuteczne wobec obu organizmów testowych. Gaza (zawierająca sulfadiazynę srebra) i włóknina C również wykazały stałą skuteczność przeciwko obu organizmom, ale były mniej skuteczne przeciwko P. aeruginosa po ponownej próbie. Pianka A, pianka B i hydrożel wykazały jedynie ograniczoną aktywność przeciwbakteryjną wobec tych organizmów. Zawartość srebra i uwalnianie srebra. Zmierzona całkowita zawartość srebra w opatrunkach wynosiła od 6 mg do 113 mg dla próbki o wymiarach 10 cm x 10 cm. Zawartość srebra była największa w włókninie B i włókninie C, a najmniejsza w włókninie A i hydrożelu (Tabela 2). Ilość srebra uwalnianego do wody oczyszczonej również była bardzo zróżnicowana i wynosiła od 17 do 111 mg/10 cm x 10 cm opatrunku w przypadku większości opatrunków po 48 godzinach i wzrastała do nieco ponad 3000 µg/10 cm x 10 cm w przypadku włókniny B (1 mg = 1000 mg). Nie stwierdzono korelacji pomiędzy uwalnianiem srebra a jego zawartością (rys. 3). Na przykład, włóknina B i włóknina C mają bardzo podobną całkowitą zawartość srebra, ale ilość srebra uwolnionego po 48 godzinach była około 50 razy większa dla włókniny B w porównaniu z włókniną C. Porównanie aktywności antybakteryjnej dla różnych opatrunków również nie wykazało korelacji pomiędzy efektem antybakteryjnym (mierzonym w modelu SWF) a zawartością srebra w opatrunkach (Rysunek 4) lub całkowitą ilością srebra uwalnianego do wody (Rysunek 5). W szczególności, zawartość srebra nie okazała się być predyktorem aktywności antybakteryjnej. Na przykład, istniała około 10-krotna różnica w zawartości srebra pomiędzy włókniną A i włókniną B, dwoma opatrunkami o bardzo podobnym działaniu antybakteryjnym. I odwrotnie, podczas gdy zawartość srebra w włókninie A, gazie i hydrożelu była zasadniczo podobna, aktywność antybakteryjna różniła się znacząco pomiędzy opatrunkami (Rycina 4). Należy jednak zauważyć, że technika zastosowana w tym badaniu mierzy całkowitą ilość srebra w roztworze i nie pozwala na rozróżnienie pomiędzy aktywnymi antybakteryjnie formami rozpuszczalnego srebra (jony srebra, Ag+) a formami nieaktywnymi, takimi jak srebro metaliczne (Ag0). Włóknina B wykazała najszybsze uwalnianie dużych ilości srebra do wody (wszystkie wartości odnoszą się do opatrunku o wymiarach 10 cm x 10 cm; 3,011 µg do 48 godzin, 3,116 µg do 7 dni) i miała dobrą aktywność antybakteryjną. Włóknina A wykazywała znacznie niższe uwalnianie srebra (17 µg po 48 godzinach, 27 µg po 7 dniach); jednak wiązało się to z równoważną aktywnością wobec P. aeruginosa i tylko nieznacznie zmniejszoną wobec S. aureus. Gaza, która była nieznacznie mniej skuteczna wobec P. aeruginosa niż włóknina A i włóknina B, miała nieco większą szybkość uwalniania srebra niż włóknina A (49 µg po 48 godzinach, 79 µg po 7 dniach). Hydrożel wykazywał szybsze tempo uwalniania srebra niż gaza (111 µg po 48 godzinach) i osiągnął poziom 179 µg w 7 dniu. Hydrożel wykazywał mniejszą aktywność przeciwbakteryjną niż włóknina A, włóknina B lub gaza. Podsumowanie zawartości srebra, szybkości uwalniania srebra i aktywności przeciwbakteryjnej dla wszystkich opatrunków przedstawiono w Tabeli 2. Właściwości przenoszenia płynów. Wchłanianie płynów. Absorpcja płynu przy swobodnym pęcznieniu (gdy opatrunek nie jest uciskany) wynosiła od 0,2 do 66,8 (wszystkie wartości w g na 10 cm x 10 cm) i była największa w przypadku dwóch opatrunków piankowych, a najmniejsza w przypadku gazy. Absorpcja płynu przy swobodnym pęcznieniu dla włókniny A była prawie tak duża jak absorpcja dla pianki B, ale była większa niż absorpcja dla pozostałych opatrunków niepiankowych. Kiedy eksperyment został powtórzony z uciskiem opatrunku 40 mmHg (typowa siła stosowana w bandażowaniu uciskowym), absorpcja płynu pozostała największa dla pianki A (32,9), ale była większa dla włókniny A (11,4) niż dla pianki B (Tabela 3). Absorpcja płynu dla pianki B i pozostałych opatrunków wahała się od 0,1 do 8,1. Różnica w absorpcji płynu pomiędzy tymi dwoma eksperymentami została użyta do wskazania, ile płynu może zostać wyciśnięte z opatrunku w przypadku zastosowania nacisku (retencja płynu przez opatrunek). Procentowa utrata płynu wynosiła około 20% dla włókniny A i B, w porównaniu do około 50% dla pozostałych opatrunków (Rysunek 6). Odległość pionowego odprowadzania wilgoci. Dla 3 opatrunków włóknistych określono odległość pionowego odprowadzania wilgoci. Dla włókniny A i włókniny C, przy zastosowaniu standardowej procedury testowej, odległości wikłania wynosiły odpowiednio 12,5 i 17,8 mm. Przy zastosowaniu tej procedury wydaje się, że płyn nie został wchłonięty przez włókninę B, lecz pozostał na powierzchni opatrunku, co sugeruje, że w przypadku tego opatrunku istnieje prawdopodobieństwo opóźnienia absorpcji płynu. Okres testowy dla włókniny B został następnie przedłużony do momentu pojawienia się absorpcji i umożliwienia wyrównania się odległości wikłania. W tych warunkach, pionowa odległość wnikania dla włókniny B wynosiła 33 mm. Dehydratacja. Szybkość odwodnienia oceniono dla 6 opatrunków. (Włóknina B nie została uwzględniona, ponieważ nie było możliwe powtarzalne uwodnienie tego opatrunku). Szybkość odwadniania wynosiła od 0,0116 g/min dla włókniny A do 0,0251 g/min dla pianki A (Ryc. 7). Większość opatrunków wyschła w ciągu około 23 godzin, jednak w przypadku gazy całkowita dehydratacja nastąpiła po około 40 minutach. W tym momencie badanie zostało przerwane. pH opatrunków. W ciągu jednego dnia zmierzono pH każdego z opatrunków w wodzie. Po 3 godzinach wartości pH wahały się od 5,4 dla włókniny A do 9,5 dla włókniny B (Tabela 4). Po 24 godzinach zakres pH uległ zmniejszeniu: niższe wartości pozostały na stałym poziomie 5,4 (włóknina A), natomiast wyższe wartości zmniejszyły się do 7,7 (włóknina B, pianka B). Dyskusja Zgodnie z oczekiwaniami, każdy SCD badany w tym badaniu wykazywał pewien stopień aktywności antybakteryjnej wobec badanych patogenów ran, z wyjątkiem pianki B, która była nieskuteczna wobec P. aeruginosa i tylko marginalnie skuteczna wobec S. aureus. Włóknina B zredukowała liczbę S. aureus do poziomu poniżej granicy wykrywalności po 24 godzinach. Jednakże włóknina A, włóknina B, gaza i włóknina C pozostały skuteczne po ponownym zakażeniu S. aureus. Włóknina A i B były wysoce skuteczne w zwalczaniu P. aeruginosa, redukując liczbę bakterii do niewykrywalnego poziomu w ciągu 24 godzin. Gaza i włóknina C były również skuteczne w walce z początkowym zakażeniem, ale były mniej skuteczne w walce z ponownym zakażeniem P. aeruginosa. Dane te, wykazujące aktywność przeciwbakteryjną opatrunków zawierających srebro, są podobne do opisanych wcześniej dla włókniny A,5,6 włókniny B (w alternatywnych formach),11 hydrożelu,10 i pianki A.10 Porównanie zawartości srebra w 7 opatrunkach wykazało ponad 10-krotną różnicę pomiędzy włókniną C i włókniną B (opatrunki o najwyższej zawartości srebra) a włókniną A i hydrożelem (opatrunki o najniższej zawartości srebra). Jeszcze większa różnica (180-krotna) wystąpiła w ilości srebra uwolnionego do wody po 48 godzinach pomiędzy włókniną B (wykazującą największe uwalnianie) a włókniną A (wykazującą najmniejsze uwalnianie srebra). Różnice te jednak nie korelują z obserwowaną aktywnością antybakteryjną. Należy pamiętać, że wszystkie opublikowane badania stężenia srebra w wodzie (w tym niniejsze badanie) nie rozróżniają pomiędzy aktywnym srebrem jonowym (Ag+) a nieaktywnym srebrem w roztworze (np. Ag0) – to znaczy, że mierzą tylko całkowite stężenie srebra. Wyniki tego badania pokazują jednak, że większa ilość srebra (w jakiejkolwiek formie) uwalnianego przez opatrunek niekoniecznie prowadzi do większej szybkości lub stopnia aktywności antybakteryjnej. W połączeniu ze zmierzonym lub obliczonym całkowitym stężeniem srebra w wodzie, szeroko opisywanym testem, który był stosowany do przewidywania potencjalnej skuteczności przeciwdrobnoustrojowej opatrunków, jest minimalne stężenie hamujące (MIC). W tych testach laboratoryjnych srebro jonowe jest dodawane do badanej kultury w postaci prostego roztworu i zakłada się, że całe dodane srebro pozostaje aktywne. W tych warunkach MIC dla srebra wynosi zwykle 5-40 µg/mL.12 Wartość ta jest mniejsza niż stężenie srebra, które, jak wykazano w tym i innych badaniach, jest uwalniane przez włókninę B,12 co przemawia za stosowaniem MIC przy wyborze opatrunku. Jednakże inne opatrunki (np. włóknina A) wykazały bardzo podobną aktywność przeciwdrobnoustrojową do włókniny B, ale przy znacznie niższym poziomie uwalniania srebra (17 µg w porównaniu z 3,011 µg na opatrunek 10 cm x 10 cm w ciągu 48 godzin) i przy zmierzonym całkowitym stężeniu srebra w roztworze wynoszącym zaledwie 1 µg/mL.13 Sugerowałoby to, że stosowanie danych MIC przy wyborze SCD może być błędne, a zatem niewłaściwe. W przypadku SCD założenia przyjęte do badania MIC mogą nie być ważne. Na przykład, prosty roztwór podawany w postaci bolusa nie może być użyty do reprezentowania złożonego preparatu o powolnym uwalnianiu. Literatura promocyjna produktów i badania sponsorowane przez firmy wskazują, że wiele z badanych produktów ma niską tendencję do dawkowania zrzutu srebra i zapewnia przedłużoną i/lub kontrolowaną dostępność srebra.14 Podobnie, srebra nie można utożsamiać z aktywnymi formami srebra, a jak wykazano w tym badaniu, wydaje się, że nie ma korelacji pomiędzy całkowitą zawartością srebra w roztworze a skutecznością przeciwdrobnoustrojową. Potencjalnym wyjaśnieniem, dlaczego SCD zachowują się w ten sposób, jest oligodynamiczna natura srebra jonowego.4 Ekspozycja na niskie poziomy stale uzupełnianego srebra jonowego przez dłuższy czas powoduje selektywną akumulację jonów srebra wewnątrz komórki bakteryjnej, a następnie jej śmierć. Stężenie srebra jonowego jest utrzymywane na niskim poziomie ze względu na małą rozpuszczalność jonów srebra w płynach z rany. Optymalne działanie obserwuje się zatem w przypadku opatrunków, które są w stanie wytworzyć i utrzymać najwyższe stężenie srebra jonowego, na jakie pozwala całkowite środowisko rany. Ponieważ trudno jest dokładnie ocenić każdą z tych właściwości opatrunku za pomocą prostych pomiarów chemicznych, prawdopodobne jest, że bezpośredni pomiar aktywności przeciwbakteryjnej w symulowanym środowisku rany (tak jak w tym badaniu) jest dokładniejszą miarą potencjalnej klinicznej aktywności przeciwbakteryjnej niż pomiar zawartości srebra lub jego uwalniania do nierealistycznego roztworu, takiego jak woda, lub pomiar danych MIC. Niektórzy komentatorzy sugerują, że uwalnianie dużych ilości srebra do rany może mieć szkodliwy wpływ na gojenie,15 a ponadto istnieją doniesienia o ogólnoustrojowym działaniu toksycznym, takim jak dysfunkcja nerek.16 Burrell12 skomentował fakt, że terapie, takie jak sulfadiazyna srebra (SSD), które kompensują inaktywację jonów srebra poprzez dostarczanie dużego nadmiaru aktywnego czynnika srebra, stwarzają problemy dla pracowników służby zdrowia i pacjentów. W trakcie niniejszych badań zauważono, że woda dejonizowana, do której uwalniane było srebro, zabarwiła się na żółto po zastosowaniu włókniny B i włókniny C. Sugeruje to, że w przypadkach, w których srebro występuje początkowo w formie metalicznej, a nie jonowej, i w których stężenie srebra w opatrunku jest szczególnie wysokie, dochodzi do reakcji pomiędzy opatrunkiem a zawartym w nim srebrem. Rana może być narażona na działanie powstałego w ten sposób żółtego związku lub kompleksu, którego działanie pozostaje do ustalenia. Doświadczenie kliniczne z różnymi formami włókniny B wykazało, że może ona prowadzić do odkładania się srebra w ranie i następującego po tym zabarwienia.17 Trzy badania in-vitro wykazały również, że uwalnianie nanokrystalicznego srebra z opatrunków jest toksyczne dla keratynocytów i fibroblastów.18-20 Konieczne są dalsze badania w celu wyjaśnienia wpływu tego zjawiska na gojenie się rany. Jak podkreślił Lansdown21 , fizyczne składniki SCD są również ważne ze względu na rolę, jaką odgrywają we wzmacnianiu środowiska rany i promowaniu korzystnych warunków do reepitalizacji i naprawy. Spośród właściwości badanych w tym badaniu, szczególne znaczenie dla wyboru opatrunku ma przenoszenie płynów. Idealnie byłoby, gdyby opatrunek posiadał zdolność szybkiego wchłaniania wysięku, dużą chłonność, a także nie uwalniał płynu przy ucisku (np. gdy pacjent obraca się w łóżku). Porównanie właściwości wchłaniania płynów przez 7 SCD wykazało różnorodność efektów. Włóknina C i 2 pianki wykazały wysoką zdolność absorpcyjną; jednakże znacznie niższa zdolność retencyjna sugeruje, że aż 50% wchłoniętego płynu może zostać utracone w warunkach ucisku. Włóknina A wykazywała wysoki poziom absorpcji, ale również doskonałą zdolność do zatrzymywania płynów, ze spadkiem tylko o około 20% pod wpływem ucisku. Było to połączone z niskim stopniem kapilarnego odprowadzania wilgoci. Natomiast gaza wykazywała słabe właściwości zatrzymywania płynów, mając bardzo niską zdolność absorpcyjną. Początkowo powierzchnia opatrunku włókninowego B wydawała się być hydrofobowa, opierając się absorpcji jakiegokolwiek płynu. Kiedy absorpcja wystąpiła, była mniejsza niż oczekiwana dla opatrunku typu alginianowego. Włóknina B wykazywała również tendencję do wchłaniania płynu, co jest właściwością fizyczną mogącą prowadzić do przeciekania, maceracji i możliwego uszkodzenia tkanek w okolicy rany. Odwodnienie jest miarą stopnia związania płynu w opatrunku i może być wskaźnikiem zdolności opatrunku do utrzymania wilgotnego środowiska rany w celu optymalnego gojenia się rany. Wskaźniki odwodnienia w tym badaniu zostały zmierzone bez obecności wtórnego opatrunku pokrywającego i są wskaźnikiem względnych właściwości samych opatrunków. Przy stałej powierzchni opatrunku włóknina A i włóknina C miały najniższe wskaźniki odwodnienia. Gaza, pianki i hydrożel wykazywały znacznie wyższe wskaźniki odwodnienia. Zmierzono pH opatrunku, aby określić, jak zmienia się jego powierzchnia pod wpływem wilgoci. Sugeruje się, że opatrunki o lekko kwaśnym pH (zbliżonym do pH zdrowej skóry; pH 5,5) mogą być najbardziej komfortowe w noszeniu. Istnieją jednak doniesienia, że niektóre opatrunki powodują podrażnienie lub kłucie po wchłonięciu wysięku, co sugeruje, że może dochodzić do zmiany pH opatrunku. Opatrunki takie jak włóknina B i gaza wykazywały zasadowy odczyn pH (wyższy niż pH 7), który stopniowo zmieniał się na bardziej neutralny (pH 7) w ciągu 24 godzin, co wskazuje, że może zachodzić jakaś forma reakcji chemicznej. W przeciwieństwie do tego włóknina A i hydrożel pozostały stabilne przez cały czas, z lekko kwaśnymi wartościami pH, odpowiednio 5,4 i 6,6/6,5. Tabela 5 podsumowuje fizyczne, chemiczne i antybakteryjne właściwości badanych zastrzeżonych SCD. Świadczy to o szerokim zakresie właściwości badanych opatrunków, co może mieć wpływ na ich zastosowanie kliniczne. Wykazana w tych badaniach mieszanina właściwości antybakteryjnych i wchłaniania płynów sugeruje, że poszczególne opatrunki antybakteryjne zawierające srebro mają różne właściwości, które czynią je bardziej lub mniej odpowiednimi do różnych rodzajów ran. Badanie to sugeruje, że wybór opatrunku antybakteryjnego powinien opierać się raczej na ocenie ogólnych właściwości opatrunku istotnych z klinicznego punktu widzenia dla danego typu rany i jej stanu niż na samej zawartości lub osadzaniu srebra. Wnioski Wybór opatrunku jest istotnym elementem skutecznego leczenia ran zakażonych i zagrożonych zakażeniem. Wybór odpowiedniego opatrunku antybakteryjnego powinien opierać się na rodzaju i stanie rany oraz na klinicznie istotnych wskaźnikach, takich jak działanie przeciwbakteryjne, gojenie się rany i zdolność radzenia sobie z wysiękiem, a nie na pojedynczym parametrze laboratoryjnym.
.