Afrykański pazurów żaba (Xenopus laevis, znany również jako xenopus, afrykański pazur ropucha, afrykański pazur-toed żaba lub platanna) jest gatunkiem afrykańskiej żaby wodnej z rodziny Pipidae. Jej nazwa pochodzi od trzech krótkich pazurów na każdej tylnej stopie, których używa do rozdzierania pokarmu. Słowo Xenopus oznacza „dziwną stopę”, a laevis oznacza „gładką”.
Gatunek ten występuje w dużej części Afryki Subsaharyjskiej (Nigeria i Sudan do Afryki Południowej), a w izolowanych, wprowadzonych populacji w Ameryce Północnej, Ameryce Południowej i Europie. Wszystkie gatunki z rodziny Pipidae są bez języka, bez zębów i całkowicie wodny. Używają rąk, aby wepchnąć jedzenie do ust i w dół gardła oraz pompy hyobranchial do rysowania lub ssania rzeczy w ustach. Pipidae mają potężne nogi do pływania i lunging po jedzenie. Używają również pazurów na nogach do rozrywania kawałków dużego pożywienia. Nie mają zewnętrznych błon bębenkowych, ale zamiast tego podskórne dyski chrzęstne, które służą do tej samej funkcji. Wykorzystują swoje wrażliwe palce i zmysł węchu, aby znaleźć jedzenie. Pipidae są padlinożercami i zjedzą prawie wszystko, co żywe, umierające lub martwe i każdy rodzaj odpadów organicznych.
Opis
Te żaby są obfite w stawach i rzekach w południowo-wschodniej części Afryki Subsaharyjskiej. Są one wodne i często są zielonkawo-szare w kolorze. Odmiany albinosów są powszechnie sprzedawane jako zwierzęta domowe. „Dziki typ” afrykańskie żaby szponiaste są również często sprzedawane jako zwierzęta domowe, a często błędnie oznaczane jako żaba kongijska lub afrykańska żaba karłowata z powodu podobnych ubarwień. Są one łatwo odróżnić od afrykańskich żab karłowatych, ponieważ afrykańskie żaby szponiaste mają pajęczyny tylko na tylnych łapach, podczas gdy afrykańskie żaby karłowate mają pajęczyny na wszystkich czterech łapach.
Rozmnażają się przez zapłodnienie jaj poza ciałem samicy (patrz rozmnażanie żab). Spośród siedmiu trybów ampleksusu (pozycji, w których żaby kopulują), żaby te można znaleźć rozmnażające się w ampleksusie pachwinowym, gdzie samiec obejmuje samicę przed tylnymi nogami samicy i ściska, aż jaja wyjdą. Jaja są następnie zapładniane.
Żaby szponiaste są jedynymi płazami, które mają rzeczywiste pazury używane do wspinaczki i rozdrabniania pokarmów, takich jak ryby lub kijanki. Składają swoje jaja od zimy do wiosny. Podczas mokrych pór deszczowych będą podróżować do innych stawów lub kałuż wody w poszukiwaniu pożywienia. W okresach suszy żaby szponiaste mogą zagrzebać się w błocie, stając się uśpione na okres do roku.
Xenopus laevis są znane z przeżycia 15 lub więcej lat na wolności i 25-30 lat w niewoli. Zrzucają skórę co sezon i jedzą własną zrzuconą skórę.
Pomimo braku woreczka głosowego, samce wydają zawołanie godowe składające się z naprzemiennych długich i krótkich tryli, poprzez kurczenie się wewnętrznych mięśni krtani. Samice odpowiadają również wokalnie, sygnalizując akceptację (dźwięk rapowania) lub odrzucenie (powolne tykanie) samca. Żaba ta ma gładką, śliską skórę, która na grzbiecie jest wielobarwna z plamami oliwkowoszarymi lub brązowymi. Spód jest kremowobiały z żółtym odcieniem.
Męskie i żeńskie żaby mogą być łatwo odróżnione przez następujące różnice. Samce żab są zwykle około 20% mniejsze od samic, o smukłych ciałach i nogach. Samce wydają dźwięki godowe, aby przyciągnąć samice, brzmiące bardzo podobnie do świerszcza dzwoniącego pod wodą. Samice są większe od samców, wydają się dużo bardziej pulchne z biodrowymi wybrzuszeniami nad tylnymi nogami (gdzie ich jaja są wewnętrznie zlokalizowane).
Zarówno samce jak i samice mają kloakę, która jest komorą, przez którą przechodzą odpady trawienne i moczowe i przez którą opróżniają się również układy rozrodcze. Kloaka opróżnia się przez otwór wentylacyjny, który u gadów i płazów jest pojedynczym otworem dla wszystkich trzech układów.
W środowisku naturalnym
W środowisku naturalnym Xenopus laevis występuje w mokradłach, stawach i jeziorach w jałowych/półsuchych regionach Afryki Subsaharyjskiej. Xenopus laevis i Xenopus muelleri występują wzdłuż zachodniej granicy Wielkiej Afrykańskiej Rift. Mieszkańcy Afryki Subsaharyjskiej są ogólnie bardzo dobrze zaznajomieni z tą żabą, a niektóre kultury wykorzystują ją jako źródło białka, afrodyzjak lub jako lek na płodność. Dwa historyczne ogniska priapizmu zostały powiązane z konsumpcją żabich udek pochodzących od żab, które zjadły owady zawierające kantarydynę.
Xenopus laevis w środowisku naturalnym są powszechnie zarażone przez różne pasożyty, w tym monogenezy w pęcherzu moczowym.
Użycie w badaniach
Zarodki i jaja Xenopus są popularnym systemem modelowym dla szerokiej gamy badań biologicznych. Zwierzę to jest szeroko stosowane ze względu na potężną kombinację możliwości eksperymentalnych i bliskiego pokrewieństwa ewolucyjnego z człowiekiem, przynajmniej w porównaniu z wieloma organizmami modelowymi. W celu uzyskania bardziej wyczerpującej dyskusji na temat wykorzystania tych żab w badaniach biomedycznych, zobacz Xenopus.
W początkach lat trzydziestych XX wieku, dwaj południowoafrykańscy badacze, Hillel Shapiro i Harry Zwarenstein, którzy byli studentami Lancelota Hogbena na Uniwersytecie Kapsztadzkim, opracowali test na ludzką ciążę poprzez wstrzyknięcie moczu kobiety do żaby Xenopus laevis. Jeśli żaba miała owulację, kobieta była w ciąży. Ten prosty i niezawodny test był powszechnie stosowany w latach 30-tych do 60-tych.
Xenopus od dawna jest ważnym narzędziem do badań in vivo w biologii molekularnej, komórkowej i rozwojowej kręgowców. Jednakże, szeroki zakres badań Xenopus wynika z dodatkowego faktu, że bezkomórkowe ekstrakty wykonane z Xenopus są głównym systemem in vitro do badań podstawowych aspektów biologii komórkowej i molekularnej. Tak więc, Xenopus jest jedynym systemem modelowym kręgowców, który pozwala na wysokowydajne analizy in vivo funkcji genów i wysokowydajną biochemię. Wreszcie, oocyty Xenopus są wiodącym systemem do badań nad transportem jonów i fizjologią kanałów.
Roger Wolcott Sperry użył X. laevis do swoich słynnych eksperymentów opisujących rozwój układu wzrokowego. Eksperymenty te doprowadziły do sformułowania hipotezy chemoaffinity.
Oocyty Xenopus stanowią ważny system ekspresji dla biologii molekularnej. Wstrzykując DNA lub mRNA do oocytu lub rozwijającego się zarodka, naukowcy mogą badać produkty białkowe w kontrolowanym systemie. Pozwala to na szybką ekspresję funkcjonalną manipulowanych DNA (lub mRNA). Jest to szczególnie przydatne w elektrofizjologii, gdzie łatwość rejestracji z oocytu czyni ekspresję kanałów błonowych atrakcyjną. Jednym z wyzwań w pracy z oocytami jest wyeliminowanie białek natywnych, które mogłyby zakłócić wyniki, takich jak kanały błonowe natywne dla oocytu. Translacja białek może zostać zablokowana lub splicing pre-mRNA może zostać zmodyfikowany przez wstrzyknięcie oligo antysensowych Morpholino do oocytu (w celu dystrybucji w całym zarodku) lub wczesnego zarodka (w celu dystrybucji tylko do komórek potomnych wstrzykniętej komórki).
Ekstrakty z jaj żab X. laevis są również powszechnie wykorzystywane do badań biochemicznych replikacji i naprawy DNA, ponieważ ekstrakty te w pełni wspierają replikację DNA i inne powiązane procesy w środowisku bezkomórkowym, co pozwala na łatwiejszą manipulację.
Pierwszym kręgowcem, który kiedykolwiek został sklonowany, była afrykańska żaba szponiasta, eksperyment, za który Sir John Gurdon otrzymał Nagrodę Nobla w dziedzinie fizjologii lub medycyny 2012 „za odkrycie, że dojrzałe komórki mogą być przeprogramowane, aby stać się pluripotentne”.
Dodatkowo kilka afrykańskich żab szponiastych było obecnych na Space Shuttle Endeavour (który został wystrzelony w kosmos 12 września 1992 r.), aby naukowcy mogli sprawdzić, czy rozmnażanie i rozwój mogą zachodzić normalnie w zerowej grawitacji.
Xenopus laevis jest również godny uwagi ze względu na jego zastosowanie w pierwszej szeroko stosowanej metodzie testowania ciąży, po tym jak Lancelot Hogben odkrył, że mocz kobiet w ciąży indukował produkcję oocytów X. laevis. Ludzka gonadotropina kosmówkowa (HCG) jest hormonem znajdującym się w znacznych ilościach w moczu ciężarnych kobiet. Obecnie, dostępny w handlu HCG jest wstrzykiwany samcom i samicom Xenopus w celu wywołania zachowań godowych i rozmnażania tych żab w niewoli o każdej porze roku.
Xenopus laevis służy również jako idealny system modelowy do badania mechanizmów apoptozy. W rzeczywistości, jod i tyroksyna stymulują spektakularną apoptozę komórek larwalnych skrzeli, ogona i płetw w metamorfozie płazów, a także stymulują ewolucję ich układu nerwowego przekształcając wodną, wegetariańską kijankę w lądową, mięsożerną żabę.
Sekwencjonowanie genomu
Wczesne prace nad sekwencjonowaniem genomu X. laevis zostały rozpoczęte, gdy laboratoria Wallingforda i Marcotte’a uzyskały fundusze z Texas Institute for Drug and Diagnostic Development (TI3D), w połączeniu z projektami finansowanymi przez National Institutes of Health. Prace szybko rozszerzyły się o rekonstrukcję de novo transkryptów X. laevis, we współpracy z grupami z całego świata, które przekazały zestawy danych do sekwencjonowania Illumina Hi-Seq RNA. Sekwencjonowanie genomu przez grupy Rokhsara i Harlanda (UC Berkeley) oraz przez Taira i współpracowników (Uniwersytet Tokijski, Japonia) dało duży impuls do rozwoju projektu, który, z dodatkowym wkładem badaczy z Holandii, Korei, Kanady i Australii, doprowadził do publikacji sekwencji genomu i jego charakterystyki w 2016 roku.
Online Model Organism Database
Xenbase jest Bazą Danych Organizmów Modelowych (MOD) zarówno dla Xenopus laevis, jak i Xenopus tropicalis. Xenbase zawiera pełne szczegóły i informacje o wydaniu aktualnego genomu Xenopus laevis (9.1).
Jako zwierzęta domowe
Xenopus laevis były trzymane jako zwierzęta domowe i obiekty badań już od lat pięćdziesiątych. Są one niezwykle wytrzymałe i długowieczne, znane są z tego, że mogą żyć do 20, a nawet 30 lat w niewoli.
Afrykańskie żaby szponiaste są często błędnie oznakowane jako afrykańskie żaby karłowate w sklepach zoologicznych. Identyfikowalne różnice to:
- Żaby karłowate mają cztery pajęcze stopy. Afrykańskie szponiaste żaby mają webbed tylnych stóp, podczas gdy ich przednie stopy mają autonomiczne digits.
- Afrykańskie żaby karłowate mają oczy umieszczone z boku głowy, podczas gdy afrykańskie szponiaste żaby mają oczy na szczycie ich heads.
- Afrykańskie szponiaste żaby mają zakrzywione, płaskie ryjki. Pysk afrykańskiej żaby karłowatej jest spiczasty.
Jako szkodnik
Afrykańskie żaby szponiaste są żarłocznymi drapieżnikami i łatwo przystosowują się do wielu siedlisk. Z tego powodu mogą łatwo stać się szkodliwym gatunkiem inwazyjnym. Mogą podróżować na niewielkie odległości do innych zbiorników wodnych, a niektóre z nich są nawet w stanie przetrwać łagodne mrozy. Wykazano, że wyniszczają rodzime populacje żab i innych stworzeń, zjadając ich młode.
W 2003 roku, Xenopus laevis żaby zostały odkryte w stawie w San Francisco’s Golden Gate Park. Wiele debaty istnieje teraz w obszarze, w jaki sposób wytępić te stworzenia i utrzymać je od rozprzestrzeniania. Nie wiadomo, czy żaby te dostały się do ekosystemu San Francisco poprzez celowe uwolnienie, czy też ucieczkę na wolność. Urzędnicy San Francisco osuszyli Lily Pond i ogrodzili teren, aby zapobiec ucieczce żab do innych stawów w nadziei, że umrą z głodu.
Dla incydentów, w których te żaby zostały wydane i pozwolił uciec do środowiska naturalnego, afrykańskie żaby szponiaste są nielegalne do posiadania, transportu lub sprzedaży bez zezwolenia w następujących stanach USA: Arizona, Kalifornia, Kentucky, Luizjana, New Jersey, Karolina Północna, Oregon, Vermont, Wirginia, Hawaje, Nevada i stan Waszyngton. Jednakże posiadanie Xenopus laevis jest legalne w New Brunswick (Kanada) i Ohio.
Feralne kolonie Xenopus laevis istnieją w Południowej Walii, Wielka Brytania.
Afrykańska żaba szponiasta może być ważnym wektorem i początkowym źródłem Batrachochytrium dendrobatidis, grzyba chytrid, który został włączony do drastycznego spadku populacji płazów w wielu częściach świata. W przeciwieństwie do wielu innych gatunków płazów (w tym blisko spokrewnionych zachodnich żab szponiastych), gdzie ten grzyb chytrid powoduje chorobę Chytridiomycosis, nie wydaje się wpływać na afrykańskiej żaby szponiastej, co czyni go skutecznym nośnikiem.
- ^ a b Tinsley, R.; Minter, L.; Measey, J.; Howell, K.; Veloso, A.; Núñez, H. & Romano, A. (2009). „Xenopus laevis”. Czerwona Lista Gatunków Zagrożonych IUCN. IUCN. 2009: e.T58174A11730010. doi:10.2305/IUCN.UK.2009.RLTS.T58174A11730010.en.
- ^ a b c d Weldon; du Preez; Hyatt; Muller; and Speare (2004). Origin of the Amphibian Chytrid Fungus. Emerging Infectious Diseases 10(12).
- ^ Christensen-Dalgaard, Jakob (2005). „Directional hearing in nonmammalian tetrapods”. In Fay, Richard R. (ed.). Sound Source Localization. Springer Handbook of Auditory Research. 25. Springer. p. 80. ISBN 978-0387-24185-2.
- ^ Maddin HC, Eckhart L, Jaeger K, Russell AP, Ghannadan M (kwiecień 2009). „The anatomy and development of the claws of Xenopus laevis (Lissamphibia: Anura) reveal alternate pathways of structural evolution in the integument of tetrapods”. Journal of Anatomy. 214 (4): 607-19. doi:10.1111/j.1469-7580.2009.01052.x. PMC 2736125. PMID 19422431.
- ^ „African clawed frog”. Smithsonian’s National ZOo. Retrieved 2019-05-07.
- ^ http://www.laboratoryxenopus.com/frogfacts.html
- ^ Garvey, Nathan. „ADW: Xenopus Laevis: Information”. Animaldiversity.ummz.umich.edu. Retrieved 2013-06-08.
- ^ Talk of the Nation. „ADW: NPR: Listening To Love Songs of African Clawed Frogs”. NPR. Retrieved 2013-06-08.
- ^ Reference: National Audubon Society. Field Guide To Reptiles & Amphibians, pp: 701 & 704; Alfred A. Knopf, 24th Printing 2008.
- ^ a b Theunissen, M.; Tiedt, L.; Du Preez, L. H. (2014). „The morphology and attachment of Protopolystoma xenopodis (Monogenea: Polystomatidae) infecting the African clawed frog Xenopus laevis”. Parasite. 21: 20. doi:10.1051/parasite/2014020. PMC 4018937. PMID 24823278.
- ^ John Measey. „Ecology of Xenopus Laevis”. Bcb.uwc.ac.za. Archived from the original on 2012-03-16. Retrieved 2013-06-08.
- ^ „Historic priapism pegged to frog legs. – Free Online Library”. www.thefreelibrary.com. Retrieved 2016-06-20.
- ^ a b c Wallingford, John B; Liu, Karen J; Zheng, Yixian (2010). „Xenopus”. Current Biology. 20 (6): R263–4. doi:10.1016/j.cub.2010.01.012. PMID 20334828.
- ^ a b Harland, Richard M; Grainger, Robert M (2011). „Xenopus research: Metamorfoza przez genetykę i genomikę”. Trends in Genetics. 27 (12): 507-15. doi:10.1016/j.tig.2011.08.003. PMC 3601910. PMID 21963197.
- ^ Hillel Harry, Shapiro Zwarenstein (marzec 1935). „Test na wczesne rozpoznanie ciąży”. South African Medical Journal. 9: 202.
- ^ a b SHAPIRO, H. A.; ZWARENSTEIN, H. (1934-05-19). „A Rapid Test for Pregnancy on Xenopus lævis”. Nature. 133 (3368): 762. doi:10.1038/133762a0. ISSN 0028-0836.
- ^ Christophers, S. R. (1946-11-16). „The Government Lymph Establishment”. Br Med J. 2 (4480): 752. doi:10.1136/bmj.2.4480.752. ISSN 0007-1447. PMC 2054716.
- ^ „QI Talk Forum | View topic – Flora i fauna – Testy ciążowe z wykorzystaniem żab”. old.qi.com. Retrieved 2018-09-08.
- ^ Nutt, Stephen L; Bronchain, Odile J; Hartley, Katharine O; Amaya, Enrique (2001). „Comparison of morpholino based translational inhibition during the development of Xenopus laevis and Xenopus tropicalis”. Genesis. 30 (3): 110-3. doi:10.1002/gene.1042. PMID 11477685.
- ^ Blow JJ, Laskey RA (November 1986). „Inicjacja replikacji DNA w jądrach i oczyszczonym DNA przez bezkomórkowy ekstrakt z jaj Xenopus”. Cell. 47 (4): 577-87. doi:10.1016/0092-8674(86)90622-7. PMID 3779837.
- ^ „The Nobel Prize in Physiology or Medicine 2012”. www.nobelprize.org. Retrieved 2016-06-20.
- ^ „Ludington Daily News – Sep 14, 1992, s. 7”. 1992-09-14. Retrieved 2013-06-08.
- ^ „Reading Eagle – Sep 11, 1992, s. A8”. 1992-09-11. Retrieved 2013-06-08.
- ^ Kean, Sam (2017). „The Birds, the Bees, and the Froggies”. Distillations. 3 (2): 5. Retrieved April 17, 2018.
- ^ Green, SL. The Laboratory Xenopus sp: The Laboratory Animal Pocket Reference Series. Editor: M. Suckow. Taylor and Francis Group, LLC, Boca Raton, Fla, 2010
- ^ Jewhurst K, Levin M, McLaughlin KA (2014). „Optogenetic Control of Apoptosis in Targeted Tissues of Xenopus laevis Embryos”. J Cell Death. 7: 25-31. doi:10.4137/JCD.S18368. PMC 4213186. PMID 25374461.
- ^ Venturi, Sebastiano (2011). „Evolutionary Significance of Iodine” (Ewolucyjne znaczenie jodu). Current Chemical Biology. 5 (3): 155-162. doi:10.2174/187231311796765012. ISSN 1872-3136.
- ^ Venturi, Sebastiano (2014). „Iodine, PUFAs and Iodolipids in Health and Disease: An Evolutionary Perspective”. Human Evolution-. 29 (1-3): 185-205. ISSN 0393-9375.
- ^ Tamura K, Takayama S, Ishii T, Mawaribuchi S, Takamatsu N, Ito M (2015). „Apoptosis and differentiation of Xenopus tail-derived myoblasts by thyroid hormone”. J Mol Endocrinol. 54 (3): 185-92. doi:10.1530/JME-14-0327. PMID 25791374.
- ^ Session, Adam; et al. (October 19, 2016). „Genome evolution in the allotetraploid frog Xenopus laevis” (Ewolucja genomu u alotetraploidalnej żaby Xenopus laevis). Nature. 538 (7625): 336-343. doi:10.1038/nature19840. PMC 5313049. PMID 27762356.
- ^ Karimi K, Fortriede JD, Lotay VS, Burns KA, Wang DZ, Fisher ME, Pells TJ, James-Zorn C, Wang Y, Ponferrada VG, Chu S, Chaturvedi P, Zorn AM, Vize PD (2018). „Xenbase: a genomic, epigenomic and transcriptomic model organism database”. Nucleic Acids Research. 46 (D1): D861–D868. doi:10.1093/nar/gkx936. PMC 5753396. PMID 29059324.
- ^ „Xenopus model organism database”. Xenbase.org.
- ^ „NPR Grudzień 22, 2007”. Npr.org. 2007-12-22. Retrieved 2013-06-08.
- ^ James A. Danoff-Burg. „ADW: Columbia: Introduced Species Summary Project”. Columbia.edu. Retrieved 2013-06-08.
- ^ „Killer Meat-Eating Frogs Terrorize San Francisco”. FoxNews. 2007-03-14. Archived from the original on 2012-10-19. Retrieved 2007-03-13.
- ^ „The Killer Frogs of Lily Pond:San Francisco poised do sprawdzenia amfibii afrykańskich drapieżników Golden Gate Park”. San Francisco Chronicle. Archived from the original on 2013-06-06.
- ^ „ADW: Honolulu Star-Bulletin Środa, 3 lipca 2002”. Archives.starbulletin.com. 2002-07-03. Retrieved 2013-06-08.
- ^ ADW: New Brunswick Regulation 92-74 Archived August 19, 2011, at the Wayback Machine
- ^ „ADW: New Brunswick Acts and regulations”. Gnb.ca. Retrieved 2013-06-08.
- ^ John Measey. „Feral Xenopus laevis in South Wales, UK”. Bcb.uwc.ac.za. Archived from the original on 2012-03-16. Retrieved 2013-06-08.